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Toma de muestras en explotaciones cunícolas para enviar al laboratorio

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P P TOMA de MUESTRAS en enviar al laboratorio dviana@uch.ceu.es TOMA DE MUESTRAS DE ANIMALES VIVOS originan con la mayor brevedad posible, tomar las medidas adecuadas para preservar la salud del resto de que no hayan sido tratados. Para la toma de cualquier tipo de muestra se debe trabajar con la mayor asepsia posible para garantizar la mejor calidad de las muestras y la seguridad del personal que las obtiene. Las muestras a tomar no deben ser siempre las mismas, sino que hay las muestras analizadas. Por ello, es fundamental realizar conservarlas y enviarlas adecuadamente, para facilitar toman en animales vivos suelen ser relativamente sencillas de recoger y pueden aportar mucha infor- en animales vivos como en animales muertos. -Animales seleccionados para el muestreo. Las muestras que se toman habitualmente a nivel de granja son: de muestras a tomar. -Condiciones y mate- rial de recogida. -Correcta identifica- -Condiciones de con- tintas muestras. -Condiciones de en- iremos ampliando informa- de muestras en animales vi- vos, como a la necropsia de animales muertos. Febrero 2011 cunicultura 7 P a) Sangre: - Material necesario anticoagulante -principalmente EDTA o heparina-. - Figura 1 Figura 2 b) Heces: - Material necesario sa o frasco. - : recoger directamen- - Mantenimiento de la muestra de mantenerse refrigeradas. - : emplear el propio reci- tal con medio de transporte. Orina: d) - Material necesario - : recoger directamente del c) - Mantenimiento de la muestra : precisa refrigera- - Material necesario - : lavar la piel con ja- Leche: e) - Material necesario (5mm) o hisopo. tomando pelo y piel, profundizando hasta que sangre ligeramente. En caso de infecciones - antes de tomar la muestra bacterianas puede tomarse la muestra con un hisopo. gotas de leche para evitar contaminaciones exter- - Mantenimiento de la muestra : no precisan re- nas. 0,3-0,5 ml de leche son suficientes. Debido a la bacteriano. - Mantenimiento de la muestra 8 cunicultura Febrero 2011 P voltear el tubo -nunca agitar- para mezclar la sangre con el aditivo del tubo. Mediante el empleo de anticoagulantes se puede obtener sangre entera o plasma, mientras que si no se emplean anticoagulantes - Mantenimiento de la muestra : se debe dejar la muestra a temperatura ambiente durante media hora o una hielo seco. Para conservar durante periodos de tiempo amplios el suero y plasma se puede congelar. Figura 3 g) Animales vivos: - : se debe introducir el animal en una caja resistente con orificios rano-. No debe introducirse agua material absorbente para la orina y los excrementos. Es preferible Las muestras deben ser remitidas al laboratorio con la mayor brevedad f) Heridas abiertas y exudados: posible, a ser posible en menos de 24 - Material necesario tipo AMIES o STUART. debe contactar con el laboratorio para - : en animales vivos permiten recoger dad nasal, endocervical, rectal y conjuntival. Se introduce el cuado. Independientemente del tipo de muestra que se tome, es indispensa- hisopo profundamente en la cavidad y se frota suavemente con- muestras rectales hay que evitar arrastrar heces, vaciando pre- granja de origen, los tejidos remiti- viamente el recto. En hisopos oculares frotar suavemente el dos -en caso de hisopos, indicar la fondo de saco conjuntival. En caso de heridas y exudados en contacto con las partes muy sucias del animal, se debe lavar y como los datos de contacto de la per- par la zona afectada evitando el contacto con cualquier otra parte y volver a introducir el hisopo en el medio de transporte. muestras de una breve anamnesis y la - Mantenimiento de la muestra : es necesario refrigerar los hisopos -si se tuviese-. Febrero 2011 cunicultura 9 P TOMA DE MUESTRAS DE ANIMALES MUERTOS: NECROPSIA En el caso de que alguna enfermedad aumente Estas necropsias permiten analizar las lesiones de los animales y facilitan la toma de muestras correc- serve un empeoramiento acusado de los animales, lidad. males y como programa preventivo de la granja. animales los animales es muy importante ya que mejor represente el proceso que se quie- re diagnosticar. La necropsia de animales muertos se do 4-6 horas desde la muerte, para evi- Figura 5 para evitar cualquier tipo de incidencia a la hora de diagnosticar. exudados en los orificios na- Figura 6 turales, posibles alteraciones del pelo o de la piel -zonas desprovistas de pelo, heridas, sos- y la postura asumida por el animal -cuello torcido [Fi- recomienda utilizar diferen- tes hisopos [Figura 6, (D)] para tomar muestras de las diferentes mucosas -oral, na- sal (A), auricular (B), ocular, vaginal y perineal (C), heri- das y exudados. En este caso como se ha descrito anterior- mente en la toma de mues- tras de animales vivos. 10 cunicultura Febrero 2011 P Figura 4 Material necesario Para realizar una necropsia de forma ordenada, - Una mesa de material duro previamente des- estabulados los animales vivos. - - Tijeras y pinzas. - Recipientes para toma de muestras: botes de - - Guantes y ropa apropiada. Figura 7 costillas aproximada- mente a 1 cm. de la por ambos lados sin romper el diafragma y para poder inspeccio- situ, al igual que la pleura. Se debe valo- quido o sustancias - sangre- libres en la cavidad o adheridas a la superficie de los pericarditis, etc.-, aspecto de la pleura y el pericardio. Febrero 2011 cunicultura 11 P mente el contenido y el estado de la mucosa, valorando la presencia de exu- la uretra y el aparato genital de la hembra, valorando el color, consistencia y Presencia de vermes redondos de color blanco d compatibles con Passalurus ambiguus. Figura 9 Toma de muestras durante la necro A la hora de realizar la necropsia resulta imprescindible realizar una correc de las lesiones que se van observando para ser remitido al laboratorio - focal, multifocal, segmental. - delimitada, deprimida, hace prominencia, etc. - - Color de las lesiones: rojo, blanco, gris, verde, negro, etc., por ejemplo el color rojo se relaciona con sangre y el color negro con melanina. - aproximada. Huevos de Eimeria. - Consistencia: blanda, firme, dura. - Exudado: seroso, mucoso, fibrinoso, purulento, otros -san- Figura 10 quiera solicitar al laboratorio la toma de muestras y su almace- muestras necesarias. Las muestras deben estar perfectamente iden- primeras en tomarse, ya que hay que evitar en la medida de lo posible con en animales vivos. Se desinfecta la superficie a muestrear para evitar con 12 cunicultura Febrero 2011 P Figura 8 macho se valora principalmente la superficie del pene y cambios de consis- espacio intermandibular, y se desarticula o secciona el hueso hioides, ficie interna de los grandes vasos. En animales que lleven poco tiempo muertos dondos de color blanco de 1-2 cm en el ciego, urus ambiguus. te la necropsia mitido al laboratorio junto con las viadas en menos de 24 horas. extensiva, igual forma pero pueden ser al- Figura 11 rcada, mal independientemente de la loca- egro, etc., y el color de forma gan zonas de tejido lesionado y sano. Las muestras deben ser re- tros -san- presentativas, nunca tienen que s observa- esuntivo y sis que se introducirse en botes adecuados, u almace- reviamen- sobre las mente iden- es el formol tamponado al 10 % aboratorio. (v/v). En ocasiones la muestra es troducirla a parte del resto de ben ser las muestras o introducirlas en dida de lo posible contaminaciones casetes especiales para tejidos -Figura 10-. Aunque la preferencia es analizar rma similar a la toma de muestras trear para evitar contaminaciones corporales o impronta. Febrero 2011 cunicultura 13

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